Creado por el Laboratorio Castro.
Retirar con pinzas estériles el filtro de policarbonato (3 µm) del tubo Falcon y depositarlo en una placa de Petri. Utilizando un bisturí y una punta de micropipeta P1000, cortar el filtro en pequeños trozos y transferirlos a un tubo de 2 mL con beads de borosilicato (Merck, Z273619-1EA). Por lo general, el filtro mantiene gotas residuales de filtración; transfiera todo el líquido al tubo con beads.
Creado por el Laboratorio Castro.
El día anterior al muestreo, lavar todo el material (bidones y jarro) con agua corriente (1 vez), hipoclorito de sodio al 1% (1 vez) y agua miliQ (3 veces).
Updated April 2023. Created by Dr. Sergio Guajardo.
1.1. Materiales.
Coriolis µ
Base para muestreo prolongado
Trípode
Fuente de energía (corriente o generador Honda EU10i)
Botella de inyección con filtro de 0.2 µm
Mangueras de inyección
Cono de recolección estéril (autoclavado) o lavado (Agua bidestilada estéril apirógena, Hipoclorito de sodio 1%, etanol 70%)
Tampón de recolección estéril (Glicerol 2% autoclavado) idealmente diluir el glicerol en agua bidestilada estéril apirógena o agua miliQ.
Updated April 2023. Created by Dr. Sergio Guajardo.
1.1. Materiales.
Bolsas para muestras estériles de 1L
Pala
Pala portátil o de jardineria
Etanol 70%
Toalla de papel
Estacas
Cordín
Regla de acero
pHmetro para suelo (HI981030, HANNA)
Medido de Conductividad para suelo (HI98331, HANNA)
Guantes de latex
1.2. Procedimiento
Determinar un sitio de muestreo que contenga un numero suficiente de plantas (al menos 3 por especie) y establecer un punto central en el área de muestreo clavando una estaca para demarcarlo. Amarrar un cordín de tres metros a la estaca y tomar muestras dentro de este radio en todas las direcciones de forma aleatoria. Se considerarán como distintos sitios de muestreo, aquello lugares cuyos centros estén separados por 80-100 metros de distancia.